FORMULARIO PARA GASES Y TERMODINÁMICA BÁSICOS

Fórmulas para gases
 

FORMULAS PARA TERMODINÁMICA 

 

Elaboró: Tenango Leonardo G. Iztacala, UNAM

FORMULARIO PARA pH Y DISTINTAS CONSTANTES

Elaboró Tenango Leonardo. G
FES Iztacala, UNAM 

LO DIFICIL QUE QUE FUE CONSTRUIR LA TABLA PERIODICA DE LOS ELEMENTOS QUIMICOS

Actualmente la tabla periódica de los elementos químicos es una base importante para la ciencia, su estructura llevo años y considerando que descubrir cada uno de los elementos, no fue para nada fácil, es de admirar como hicieron una estructura bien definida de esta. No se trata de convencer que es una maravilla de estructura, si no de poder entender que debemos conocer parte de su historia, para tomarle cierto alago.
La Royal Society of Chemistry nos dice que los químicos siempre han buscado formas de organizar los elementos para reflejar las similitudes entre sus propiedades. La tabla periódica actual enumera los elementos en orden creciente número atómico. Históricamente, sin embargo, las masas atómicas relativas fueron utilizadas por los científicos que trataban de organizar los elementos.
 Esto se debió principalmente a que la idea de que los átomos estuvieran compuestos de partículas subatómicas más pequeñas (protones, neutrones y electrones) no se había desarrollado. Aunque, la base de la tabla periódica moderna estaba bien establecida e incluso utilizada para predecir las propiedades de los elementos no descubiertos mucho antes de que se desarrollara el concepto del número atómico.
Ahora bien, según a esto, ya en 1809, teniendo al menos 47 elementos de la tabla periódica, fue como se comenzó a ver que cada uno tenía diferentes propiedades. Curiosamente algunos casos fueron actos de coincidencias, de igual manera con los descubrimientos de los mismos. Por ejemplo, el descubrimiento del Fosforo, en 1669, destacado por un accidente de la alquimia de esos momentos por Hennig Brand al querer descubrir la Piedra Filosofal con orina.
Aun no se tenía un orden, había que estudiar cada uno de los elementos descubiertos para llegar a derivar su organización, tan solo hay que imaginar que hasta 1862, se publicó un orden teórico de la tabla periódica, y ya se había descubierto al menos 9 elementos más.
Tuvieron que pasar 53 años para eso. Con base a esto, nos damos cuenta de que no fue para nada fácil, estudiar cada uno de los elementos químicos que se habían descubierto hasta entonces, porque para 1863 apenas el Químico inglés John Newlands dividió los entonces descubiertos 56 elementos en 11 grupos, ya en ese año hacia adelante, fue haciéndose un grupo de Químicos que dieron sus diferentes tipos de estructura de la tabla periódica, con el paso del tiempo, lo que llego al final con la composición actual de la misma, todo gracias a la aportación de cada uno de los científicos.
 Para 1869 Alexandre Béguyer de Chancourtois  y Dimitri Mendeleev iniciaron el desarrollo de la tabla periodica, cada quien por su posición. Dimitri los organizo por masa atómica, y fue descubriendo más elementos, y 6 años después Sir William Ramsay y Lord Rayleigh descubrieron los gases nobles.
Entrando al siglo XX la era de la, estructura, porque ya no era solo descubrir un orden, si no conocer la estructura de un elemento para determinar en qué lugar exacto debía estar en la tabla periódica. Asimismo, los Curie, Rutherford, JJ Thomson, Bohr, Henry Moseley cada uno aporto, con sus descubrimientos, la radioactividad, los electrones, orbitales, protones, masa atómica, etc. Y hasta 1932, James Chadwick descubrió los neutrones, y los isotopos, llegando a la bien definida tabla. Ese mismo año, Cokroft y Walton experimentaron que al dividir partículas, van cambiando los elementos. Hasta 1945 Glenn Seaborg identifico los Lantánidos y Actínidos. 
¿Acaso un solo hombre hubiera descubierto todo lo que hoy en día conocemos de la tabla?
Si lo analizamos, en cierto punto es imposible. Tuvieron que pasar cerca de 150 años, tan solo para estructurar una tabla que hoy en día podemos traer hasta en la cartera, es a mi parecer, un arte científico, un arte en donde la naturaleza aporto con sus elementos, y los científicos, aportaron con su mente, estudios, conocimientos, experimentos, observaciones, en fin, la tabla periódica.

Actualmente los elementos se ordenan en base a su número atómico creciente, y se reúnen en grupos y periodos. Los periodos son filas que se encuentran de manera horizontal, se caracterizan por propiedades químicas y físicas. Los Grupos son las columnas verticales de la tabla, consta de 18 grupos, los elementos en un mismo grupo tiene propiedades químicas similares.
Asimismo, también los elementos fueron clasificados de acuerdo a su composición, son  4 clases:
Elementos representativos, que son los elementos del grupo A
Elementos de transición interna, son los lantánidos y actínidos
Elementos de transición son los que aparecen en el grupo B
Los Gases nobles, son los que están el grupo 8ª
Finalmente, los bloques, son el orden de los elementos químicos con el último subnivel que se forma. SPDF
Bloque “s” ------------------- Grupos 1ª y 2ª
Bloque “p” ------------------------- Grupos 3ª al 8ª
Bloque “d” ----------------------------------- elementos de transición
Bloque “f” ------------------------------ elementos de transición interna
Bien si a algunas personas les da pereza conocer todo lo que compone a la tabla periódica, considero que al menos una vez en nuestra vida vamos a hacer uso de ella. Un científico debe de conocer  muy bien sus historia, para conocer que el verdadero arte de la ciencia, no se concentra muchas veces en un solo hombre si no en varios científicos para determinar la seriedad con la que han trabajado y así hacer un aporte a las generaciones del futuro.

Elaboró Tenango Leonardo. G

Cartografía Básica

 Ejemplo.
Dada una escala de 1:25000     1cm:25000 cm   entonces, pasando a metros, 1cm=250 metros

Supongamos que un cuadro de nuestro mapa mide 4cm x 4cm, esto quiere decir que cada cuadro va a medir 1000m x 1000m, porque 1cm mide 250 metros.

Para convertir a coordenadas UTM, dado un punto en la superficie del mapa se realiza lo siguiente: Recordemos que la Latitud se mide de Sur a Norte y los paralelos van de Este a Oeste

Se hace un trazo en perpendicular de mi punto, a los lados del mapa. En la Latitud, mido mi segmento “y” de sur a norte desde el último paralelo que es de 2205000. Mide 3.3 cm, por lo que hago el cálculo para obtener la medida en metros de ese segmento, haciendo una regla de  3, mi resultado fue de 825m.  Este resultado se lo sumo a 2205000, y el numero resultante, serán mis metros Norte. (2205000 está establecido en metros)

2205000m + 825m = 2205825mN

Posteriormente, Ubico en el eje “x” el número del paralelo, si este resulta exacto, pongo el mismo número que me indica, pero si el número se establece en otra parte del segmento,  hago lo mismo, pero midiendo de Este a Oeste. Mi número es de 542000. Por lo que este número serán mis Metros Este.

Concluyendo

x= 542000 mE, y=220582mN

Asimismo va a suceder cuando nos den a medir una línea Equidistante de 10 m, siempre apoyándonos de la escala real para obtener la pendiente. 

Elaboró Tenango Leonardo Gabriel Armando.
Ciencias de la Tierra, FES Iztacala UNAM

CROMATOGRAFÍA EN COLUMNA DE PIGMENTOS VEGETALES Y SEPARACIÓN DE ÁCIDOS GRASOS, ESTEROIDES POR CROMATOGRAFÍA EN CAPA DELGADA

CHROMATOGRAPHY IN COLUMN OF VEGETABLE PIGMENTS AND SEPARATION OF FATTY ACIDS, STEROIDS BY CHROMATOGRAPHY IN THIN LAYER

Cruz Gutiérrez, K.1,Gutiérrez Romero, J.2,Hernández Martínez, A.3,López Morales, M.4,Medina Ocadiz, B.5, Tenango Leonardo, G.6.

Facultad de Estudios Superiores Iztacala, Carrera de Biología, Universidad Nacional Autónoma de México, Ciudad de México, México.
Biomoléculas, Av De Los Barrios 1, Los Reyes Ixtacala, Hab Los Reyes Ixtacala Barrio de los Árboles/Barrio de los Héroes, 54090 Tlalnepantla, Méx.

Resumen

La cromatografía es un método de separación de especies químicas, cuyo fundamento es la velocidad con la que se mueve cada sustancia dependiendo de su afinidad relativa por el equilibrio de distribución. En presencia de la fase estacionaria y fase móvil, los componentes más afines a la fase estacionaria avanzan lentamente mientras que en la fase móvil se mueven con mayor rapidez. Se evidenció la presencia de los pigmentos en la espinaca con ayuda de una Cromatografía en Columna, donde se obtuvo una solución con óxido de aluminio, Hexano-Acetona como eluyente y extracto de espinaca. Se colectaron muestras de los pigmentos y una vez obtenidos se midieron en el espectrofotómetro para diferenciar los pigmentos respecto a su absorbancia. Finalmente, los resultados leídos de los 4 pigmentos en el espectrofotómetro indicaron que la línea azul de la M1, absorbe luz anaranjada, la M2, línea rosa, luz roja, azul y violeta, M3, la línea roja, absorbe luz roja, verde, azul y violeta, en tanto la M4, solo da indicio de que absorbe luz azul. De acuerdo a Khana Academy (2016) en las plantas, la clorofila a y clorofila b son los principales pigmentos fotosintéticos, que absorben longitudes de onda azules y rojas. 

Además se aplicó una Cromatografía de Capa Delgada para la identificación de los ácidos grasos y esteroides, revelando la placa de ácidos grasos con sulfato cérico amoniacal y la placa de esteroides con cloruro cobaltoso, concluyendo que en ácidos grasos, se puede observar que el valor más elevado de polaridad lo presenta el ácido esteárico, ya que muestra el Rf más bajo, por el contrario el ácido láurico presenta menos polaridad, debido a su alto valor de Rf, por lo que ambos son saponificables, de acuerdo a López (2012), que dice que la estructura química de los ácidos grasos tienen un grupo carboxilo, que está cargado negativamente, el cual es hidrofílico, y una cadena de hidrocarburo larga que es hidrofóbica. Por otra parte, en esteroides muestra que la testosterona y el colesterol fueron las muestras menos polares ya que de acuerdo a Goñi y Macarulla (1994), en la cromatografía de capa fina en lípidos, los menos polares tienen un Rf más alto.

Introducción 

La cromatografía es un método de separación de especies químicas, que tiene como característica la fase estacionaria y fase móvil. La clave de la separación en cromatografía es que la velocidad con la que se mueve cada sustancia depende de su afinidad relativa por ambas fases (equilibrio de distribución). En el experimento de Tswett, la separación de los pigmentos vegetales se logró gracias a que cada uno de ellos tenía una afinidad diferente por las fases. Los componentes más afines a la fase estacionaria avanzan lentamente mientras que los más afines a la fase móvil se mueven con mayor rapidez. Por consecuencia, el medio cromatográfico (columna, placa o papel) funciona como un controlador de la velocidad de cada sustancia que constituye la mezcla, logrando así su separación y mediante el uso de un detector, su caracterización química (UNAM, 2017).

En 1906, el botánico Ruso M. Tswett realizó un experimento que condujo al descubrimiento de lo que hoy conocemos como cromatografía. Colocó un extracto de pigmentos vegetales en la parte superior de una columna de vidrio rellena de carbonato de calcio (CaCO3). Al agregar éter, observó que la mezcla original se separaba en diversas bandas coloridas que descendían a través de la columna a diferentes velocidades. Los pigmentos clorofílicos son insolubles en agua, pero sí son solubles en solventes orgánicos como el alcohol etílico y la acetona. Existen otros solventes que presentan afinidad por algunos pigmentos y se los llama separadores, como el tetracloruro de carbono y el éter de petróleo. Las propiedades físicas de la luz y otros tipos de energía radiante se propagan a través del espacio en forma de ondas. La luz del sol o la luz blanca procedente de cualquier fuente artificial aparece como homogénea al ojo humano, pero cuando se la pasa a través de un prisma, se descompone en un espectro de colores. El orden que aparecen los colores más importantes en el espectro de la luz blanca son: el rojo, anaranjado, amarillo, amarillo-verdoso, verde, verde-azulado, azul, índigo, violeta. Cada uno de estos colores responde a un rango diferente de longitud de onda de luz. La longitud de onda es la diferencia entre dos crestas de ondas sucesivas. Las longitudes de onda que producen la luz se hallan aproximadamente entre los 3900 Å en el violeta hasta 7600 Å en la zona más alejada al rojo. Por debajo de la región de la luz visible, en la escala de energía radiante, sigue la zona del ultravioleta (UV). Aquellos que están por encima de la luz visible responden al infrarrojo (IR) (González, C., 2002).

La Cromatografía en Capa Delgada (CCD) es una técnica de adsorción sólido-líquido, en donde la fase estacionaria es sólida y la fase móvil es líquida. Se lleva a cabo sobre una capa delgada uniforme de adsorbente adecuado, extendido sobre una lámina de vidrio, metal o plástico recubierta con una capa delgada de un sólido adsorbente (gel de sílice o alúmina) y activada por un calentamiento en un horno de 100 °C. Influyendo factores, las fuerzas de atracción entre los solutos y los adsorbentes y las fuerzas que tienden a separar todos los solutos El proceso es similar a la cromatografía de papel con la ventaja de que se desarrolla más rápidamente, proporciona mejores separaciones y se puede elegir entre diferentes adsorbentes. La CCD es una técnica estándar en el laboratorio de química orgánica. Debido a su simplicidad y velocidad (Dugarte, 2012).

Objetivos 

• Separar por cromatografía de adsorción los diferentes pigmentos vegetales a partir de un extracto de hojas. 
• Determinar el tipo de pigmento fotosintético (clorofila a, b ó carotenoides totales) separado a través de un barrido espectrofotométrico de cada una de las bandas separadas y los picos máximo de absorción de cada uno de ellos. 
• Discutir los fundamentos fisicoquímicos y los parámetros que se evalúan en la cromatografía en capa delgada. 
• Separar una muestra de ácidos grasos y una de esteroides por cromatografía en capa delgada 
• Analizar los parámetros de las dos muestras separadas. 

Metodología

CROMATOGRAFÍA EN COLUMNA DE PIGMENTOS VEGETALES

A) Preparación de la columna.

Se preparó la columna (jeringa) en posición vertical en el soporte universal, colocando en el fondo de la columna un círculo de papel filtro del diámetro exacto de la columna y sobre éste un poco de algodón. En la aguja encontrada en la parte inferior de la jeringa, se insertó un tapón, y se agregó el hexano-acetona (30:70) dentro de la columna, 2 cm por arriba del algodón. 

Posteriormente, se introdujo lentamente el absorbente óxido de aluminio directamente a la columna, procurando que quedaran 2 ml del solvente (hexano-acetona 30:70) por encima del óxido de aluminio. Una vez que se terminó de agregar los 12 gramos de óxido de aluminio, se depositó un segundo círculo de papel filtro sobre la columna, y consecuentemente quitar la aguja, permitiendo el flujo del eluyente hasta que quedará 1 cm por encima del adsorbente. 

Una vez lista la columna, se retiró el tapón lo cual permitió el flujo del eluyente por 2 minutos.

B) Preparación del extracto y separación de los pigmentos.

Se pesaron 5 g de hojas frescas de espinaca y se cortaron en trozos pequeños, macerándolos perfectamente con 5 ml de hexano-Acetato de Etilo (60:40), recuperando la parte líquida en un tubo de ensayo, evitando la entrada de pedazos de tejido. Enseguida, se agregaron 5 mL más del solvente, recuperando nuevamente la parte líquida en el tubo. Se retiró el tapón de la jeringa para permitir el flujo del eluyente dejando parcialmente vacía la columna, y se depositaron 4 ml del macerado en el lecho del adsorbente. Se fue agregando más eluyente hasta que se separaron los pigmentos, colectando fracciones en los tubos “eppendorf” arriba de la marca de 1 mL, en los 25 tubos. 

C) Barrido espectrofotométrico.

Se programó el espectrofotómetro para obtener la absorción de 4 de las 25 fracciones de color que se obtuvo de la cromatografía. Para esto, se calibró el espectrofotómetro en el intervalo descrito utilizando hexano como blanco de reactivos. 

SEPARACIÓN DE ÁCIDOS GRASOS, ESTEROIDES POR CROMATOGRAFÍA EN CAPA DELGADA.

Se marcó una placa de sílice conforme al número de patrones de ácidos grasos y esteroides a utilizar, y una vez marcada, se aplicaron los patrones y la muestra con los capilares correspondientes (4 veces c/u).

En un vaso de precipitado se saturo la cámara durante 5 minutos con éter de petróleo-éter dietílico (80:20) para ácidos grasos y hexano-acetato de etilo(40:60) para esteroides. Posteriormente, la placa de ácidos grasos se reveló con sulfato cérico amoniacal y la placa de esteroides con cloruro cobaltoso. Finalmente, introducimos ambas placas en el horno, dejando ácidos grasos 1 hora a 120ºC y esteroides 30 min a 120ºC.

SEPARACIÓN DE ÁCIDOS GRASOS, ESTEROIDES POR CROMATOGRAFÍA EN CAPA DELGADA.

En una placa de sílica gel 25 de 6x4cm se trazó una línea a lo ancho 0.5 cm por arriba de la parte inferior,sobre la línea se marcaron 4 espacios separados por 1 cm,se aplicó 4 veces con un capilar cada uno de los patrones de ácidos grasos (Capróico, láurico, esteárico, y lignocérico). se dejó secar perfectamente el líquido entre cada aplicación.Posteriormente en una segunda placa se trazaron 5 puntos y se aplicaron de manera similar cada uno de los patrones de esteroides :colesterol, estradiol, progesterona,testosterona y el problema (pastilla anticonceptiva).

Se adiciono 5 ml de mezcla de disolventes éter de petróleo-éter etílico (80-20) al vaso de precipitados de 140 ml, Se colocó encima una tapa de caja Petri y se dejó saturar durante 5 min.Se coloco la placa con los patrones de ácidos grasos y se permite la elución hasta que el frente alcance la parte más superior de la placa aproximadamente 10 minutos. Una vez que la placa se retiro,se permitio la evaporación de los disolventes.La placa se rocio de una solucion reveladora de sulfato cérico,hasta que quede completamente impregnada de este,se dejo secar unos minutos para que después se introdujera la placa seca,en un horno a 120°C durante 1 hora, hasta que las manchas sean evidentes.

En otro vaso de precipitado se adicionaron ml de mezcla de disolventes de hexano-acetato de etilo (60:40). Coloque la tapa de caja Petri y deje saturar 5 min.Se coloco la placa con los patrones de esteroides y se permitió la elución hasta que el frente alcanzara la parte más superior de la placa aproximadamente 10 minutos.Se rocio la placa en solución reveladora de cloruro cobaltoso hasta que quedó perfectamente impregnada,se dejó secar para colocar la placa en un horno a 120°C durante 15-30 minutos, hasta que las manchas sean evidentes.

Resultados:

Cromatografía en columna de pigmentos vegetales

Figura 1: Tubos de los pigmentos seleccionados para espectrofotometría.

Figura 2: Espectro de absorción de pigmentos vegetales. En la siguiente gráfica se puede observar el barrido espectrofotométrico de los pigmentos vegetales a diversas concentraciones.

SEPARACIÓN DE ÁCIDOS GRASOS, ESTEROIDES POR CROMATOGRAFÍA EN CAPA DELGADA

Ácido graso	Valor de RF	Platos	k’
Caproico	0.8	6400	0.25
Láurico	0.78	2704	0.2820
Esteárico	0.4	1600	1.5
Lignocérico	0.38	361	1.631

Tabla 1 .Determinación de los valores,utilizando parámetros necesarios de los ácidos grasos por medio de una cromatográfica en capa delgada.

Estándares	Rs
Láurico-Caproico	0.06
Esteárico-Caproico	3.35
Lignocérico-Caproico	2.98
Esteárico-Láurico	2.07
Lignocérico-Láurico	2.35
Lignocérico-Esteárico	0.04

Tabla 2. Determinación de los Rs de ácidos grasos según los valores de K’. Para seleccionar las mejores condiciones de la cromatografía, evaluando la resolución del sistema para 2 componentes de una mezcla.

Esteroides	Valor RF	Platos	k’
Problema	0.7	2177.77	0.4285
Testosterona	0.76	2567.11	0.3157
Progesterona	0.64	4096	0.5625
Estradiol	0.54	144	0.8518
Colesterol	0.76	641.77	0.3157

Tabla 3.Determinación de los valores,utilizando parámetros necesarios de los esteroides por medio de una cromatografía en capa delgada.

Estándares	Rs
Testosterona-Problema	0.15
Progesterona-Problema	0.149
Estradiol-Problema	0.42
Colesterol-Problema	0.16
Testosterona-Progesterona	0.2
Testosterona-Estradiol	0.69
Testosterona-Colesterol	0
Progesterona-Estradiol	0.22
Colesterol-Estradiol	0.69

Tabla 4. Determinación de los Rs de esteroides según los valores de K’. Para seleccionar las mejores condiciones de la cromatografía, evaluando la resolución del sistema para 2 componentes de una mezcla.

Discusión de resultados

En los resultados de separación de pigmentos se observaron bandas de diferentes colores corriendo a través de la columna como verde, amarillo claro y amarillo anaranjado, estas bandas tenían diferente grosor, dependiendo de la abundancia del pigmento en la disolución. Las que tenían más afinidad por el disolvente bajaban más rápido que los otros pigmentos, ésto se debe a la afinidad del disolvente. De acuerdo con Buchanan et. al (2000), la razón de separación de cada pigmento en la columna de adsorción se debe a que los cloroplastos poseen una mezcla de pigmentos con diferentes colores. Todas estas sustancias presentan un grado diferente de solubilidad en disolventes apolares, lo que permite su separación cuando una solución de las mismas desciende por a través de una columna de cromatografía verticalmente sobre una película de un disolvente orgánico, ya que las más solubles se desplazarán a mayor velocidad, pues acompañan fácilmente al disolvente a medida que éste desciende.

Viera (2014) señala que el color que presenta un determinado órgano vegetal depende generalmente del predominio de uno u otro pigmento o la combinación de ellos. Además afirma que los pigmentos que condicionan el color están estrechamente ligados a las actividades fisiológicas del propio vegetal. Con ayuda de una cromatografía en columna de pigmentos vegetales, en nuestro estudio se realizaron los 25 tubos con los matices filtrados y de acuerdo a diferencias en el color fueron seleccionadas 4 colorantes (Figura 1). En contexto con la investigación mencionada del autor, el color verde Lima corresponde a la Clorofila b, el verde brillante a la Clorofila a, y el color amarillo a la xantofila, y pigmentos claros un poco anaranjados a los carotenos del vegetal. Haciendo un análisis y comparación con Manrique (2003) menciona que los rangos de longitud de onda para la luz visible son: violeta 380–450 nm, azul 450–495 nm, verde 495–570 nm, amarillo 570–590 nm, anaranjado 590–620 nm, rojo 620–750 nm. 

Los resultados leídos de los 4 pigmentos en el espectrofotómetro indican que, la línea azul de la M1, absorbe la luz anaranjada, la M2, línea rosa, la luz roja, azul y violeta. La línea roja, M3, absorbe luz roja, verde, azul y violeta, en tanto la M4, solo da indicio de que absorbe la luz azul. De acuerdo a Khana Academy (2016) en las plantas, la clorofila a y clorofila b son los principales pigmentos fotosintéticos. Las moléculas de clorofila absorben longitudes de onda azules y rojas. Basándonos en el enunciado anterior, y con Viera (2014), la muestra M1 Y M2 (Figura 1) destacan la aparición de los pigmentos de Clorofila b y Clorofila a. El segundo caso (M2) concuerda con lo dicho por Khana Academy con la luz azul, pero no con M1. El último caso la M3, se comparó con resultados que obtuvo Laboratorio de Química Orgánica Aplicada (2013) que en sus desenlaces para su muestra de color amarillo presenta una absorbancia de 483.01 nm, lo que corresponde a que absorbe luz azul, evidencia de que en un porcentaje elevado, nuestra M3 de color amarillo, en efecto, coincide con el mismo color de luz, presentando xantofilas. 

Dentro de los resultados de cromatografía en capa fina de ácidos grasos se puede observar que el valor más elevado de polaridad lo presenta el ácido esteárico, ya que muestra el Rf más bajo, por el contrario el ácido láurico presenta menos polaridad, debido a su alto valor de Rf, se puede decir que ambos son saponificables, de acuerdo a López (2012), la estructura química de los ácidos grasos tienen un grupo carboxilo, que está cargado negativamente, es hidrofílico, y una cadena de hidrocarburo larga que es hidrofóbica. Esto se debe a que los átomos de oxígeno del grupo carboxilato comparten la carga negativa y participan en un enlace de hidrógeno fuerte con las moléculas de agua, el resto de la molécula es la cadena de hidrocarburo que no puede participar en el enlace de hidrógeno con el agua. Observando los resultados de los ácidos grasos respecto a la cantidad de equilibrios que se establecen entre el soluto, la fase móvil y estacionaria (Plato teórico), se hace mención que entre mayor sea la cantidad de platos teóricos,mayor la eficiencia del sistema,entonces conforme a la tabla 1, menciona que el ácido caproico tiene un plato teórico de 6400, por lo tanto este es el ácido que tiene una mayor eficiencia. Basándonos en este contexto, de acuerdo con Esquivel y Leal (2004) la relación entre N y Rs está definida por el cuadrado de N. Por ejemplo, un incremento en el número de platos teóricos N de 100 a 625 aumentará la resolución por un factor de 2.5 y no por uno de 6.25. Otra forma de mejorar la resolución consiste en reducir la altura de los platos lo cual puede conseguirse disminuyendo el tamaño de partícula del relleno o bajando la viscosidad del disolvente. Con base a esto la tabla 2 nos dice que el estándar de estearico-caproico son los que aparentemente tienen una mejor resolución con un RS de 3.35. 

Respecto a los valores de k’ indican que no proporcionan una resolución adecuada entre los solutos, ya que de acuerdo a Esquivel y Leal (2004), la fase móvil seleccionada debe dar valores de k’ que estén en el rango de 1 a 20. Valores mayores de k´generan tiempos de retención largos y valores menores que la unidad no proporcionan una resolución adecuada entre solutos. Los solventes fuertes proveen pequeños valores de k’, mientras que los solventes débiles dan valores de k’ más altos, de acuerdo a esto la tabla 2 nos muestra los valores de k’ menores a 1, esto quiere decir que los solventes utilizados para cromatografía de ácidos grasos son fuertes. 

Por otra parte, Goñi y Macarulla (1994), declaran que en la cromatografía de capa fina en lípidos, los menos polares tienen un Rf más elevado, en el caso de esteroides se expone que la testosterona y el colesterol fueron las muestras menos polares, obteniendo los mismos valores en Rf, también se puede decir que el esteroide que resultó ser más polar fue el estradiol obteniendo el valor muy inferior de Rf.

Considerando los resultados obtenidos del factor de capacidad (k’), la Universidad Central de Venezuela (2008), designa que este valor describe las velocidades de migración y se interpreta considerando que mientras más elevado sea el valor de este factor, será la velocidad de migración, lo cual concuerda con los resultados, puesto que el valor más alto fue el estradiol, con un valor de k’=0.8518. Con esto se puede exponer que como su valor fue mayor presentó mínima lejanía a comparación de las otras muestras.Cabe mencionar que al comparar los resultados de platos y Rs que tomando la referencia de de Esquivel y Leal ( 2004), se puede decir que el esteroide más eficaz en los resultados obtenidos en los platos fue la progesterona, ya que entre más números de platos, habrá mayor resolución. En cambio en los resultados de Rs ningún esteroide tuvo una buena resolución ya que todos quedan por debajo del valor 3.5, el cual como se mencionó anteriormente indica aparentemente una mejor resolución.

Finalmente y englobando los conceptos utilizados en nuestra experimentación, Silva y García (2006), este tipo de cromatografía se utiliza para determinar lípidos, esteroides, azúcares y aminoácidos de bajo peso molecular, declaran que esta clase de cromatografía se suele realizar de manera ascendente y que se puede poner de manifiesto las diferentes sustancias que aparecen con colores, luz ultravioleta o revelado específico, lo que explica las diferentes coloraciones que obtuvieron nuestras muestras.

Con los resultados arrojados de la muestra problema y la progesterona, revelaron muy poca variedad en el Rf , debido a que en la primera se utilizó un gel vaginal que contenía 90 mg de progesterona como principio activo. Ésta información fue avalada por el Ministerio de política y sanidad (2010).

Conclusiones

En relación a la separación por cromatografía de adsorción de los pigmentos vegetales, se entendió la importancia y el funcionamiento para la identificación de estos, concluyendo que se logró identificar 4 diferentes pigmentos que contiene la espinaca por medio de una gráfica de absorbancia contra longitud de onda. 

Por otra parte, se da por entendido el fundamento práctico de las lecturas en el espectrofotómetro, y el significado de la información que nos arroja el dispositivo al software, correspondiendo a la interpretación de la información. 

Se comprendió el fundamento de la Cromatografía en Capa Delgada, partiendo de la polaridad de cada estándar, de los solventes utilizados para la revelación de los RF obtenidos, analizando la relación que existe entre éstos. 

Finalmente se identificó que los esteroides tienen una mayor y menor polaridad según su RF. Los menos polares tienen un Rf más alto, por lo tanto testosterona y el colesterol son los esteroides menos polares. Respecto a los ácidos grasos, se reconoció con mas polaridad el ácido esteárico debido que muestra un RF más bajo comparado con los demás. 

Bibliografía 

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4. García, J., Silva, C. (2006). Laboratorio de Bioquímica, Editorial Mad, S. L. pp. 27 
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FOTOGRAFIAS PINTURAS DEL TALLER DE EXPRESIÓN Y DISEÑO DE UN LIBRO